г. Санкт-Петербург и Ленинградская область, Россия
Возможность трансформации типов мышечных волокон под влиянием тренировки является одной из актуальных проблем спортивной науки. Цель исследования – аналитический обзор данных документальных источников о возможности изменения композиции скелетных мышц спортсменов под влиянием тренировки. Методы исследования: анализ научных публикаций в базах данных PubMed, Medline и Google Scholar. Результаты исследования и выводы. Классификация мышечных волокон на основе оценки активности АТФ-азы миозина свидетельствует о том, что cиловая тренировка не меняет соотношение мышечных волокон типа I и II, но увеличивает процент волокон типа IIA. Анализ одиночных волокон с использованием SDS-PAGE не дает чёткого ответа на вопрос о трансформации мышечных волокон при силовых тренировках. Исследования влияния тренировки на выносливость и композицию волокон, основанные на оценке активности АТФ-азы миозина, противоречивы. Одни данные подтверждают генетическую предрасположенность соотношения волокон типа I и II, другие – возможность изменений. Анализ одиночных волокон с использованием SDS-PAGE показывает, что их композиция может изменяться в сторону увеличения процента медленных волокон типа MHCI за счет гибридных мышечных волокон.
силовая тренировка, тренировка на выносливость, композиция мышечных волокон, состав мышечных волокон
1. Denny-Brown D. E. The Histological Features of Striped Muscle in Relation to its Functional Activity // Proceedings of the Royal Society of London. 1929. Vol. 104. P. 371–411.
2. Язвиков В. В. Анализ состава скелетно-мышечных волокон в мышцах гребцов // Теория и практика физической культуры. 1988. № 12. С. 38–39.
3. Padykula H. A., Herman E. The specificity of the histochemical method of adenosine triphosphatase // Journal of Histochemistry & Cytochemistry. 1955. Vol. 3. P. 170–195.
4. Brooke M. H., Kaiser K. K. Three “myosin ATPase” systems: the nature of their pH lability and sulfhydryl dependence // Journal of Histochemistry & Cytochemistry. 1970. Vol. 18. P. 670–672.
5. Laemmli U. K. Cleavage of Structural Proteins during the Assembly of the Head of Bacteriophage T4 // Nature. 1970. Vol. 227. P. 680–685.
6. Perrie W. T., Bumford S. J. Electrophoretic separation of myosin isoenzymes. Implications for the histochemical demonstration of fibre types in biopsy specimens of human skeletal muscle // Journal of the Neurological Sciences. 1986. Vol. 73. P. 89–96.
7. Muscle Fiber Type Transitions with Exercise Training: Shifting Perspectives / Plotkin D. L., Roberts M. D., Haun C. T., Schoenfeld B. J. DOIhttps://doi.org/10.3390/sports9090127 // Sports. 2021. Vol. 127, No 9. P. 1–11. EDN: https://elibrary.ru/ZEAINB.
8. A rationale for SDS-PAGE of MHC isoforms as a gold standard for determining contractile phenotype / Pandorf C. E., Caiozzo V. J., Haddad F., Baldwin K. J. // Journal of Applied Physiology. 2010. Vol. 108. P. 222–225.
9. Scott W., Stevens J., Binder-Macleod S. A. Human Skeletal Muscle Fiber Type Classifications // Physiology Review. 2001. Vol. 81. P. 1810–1816.
10. Skeletal muscle hypertrophy and structure and function of skeletal muscle fibres in male body builders / D’Antona G., Lanfranconi F., Pellegrino M. A. [et al.] // Journal of Physiology. 2006. Vol. 570, No 3. P. 611–627.
11. Reduction in hybrid single muscle fiber proportions with resistance training in humans / Williamson D. L., Gallagher P. M., Carroll C. C. [et al.] // Journal of Applied Physiology. 2001. Vol. 91. P. 1955–1961.
12. Structural changes in skeletal muscle tissue with heavy-resistance exercise / Lüthi J. M., Howald H., Claassen H. [et al.] // International Journal of Sports Medicine. 1986. Vol. 7, No. 3. P. 123–127.
13. Muscle hypertrophy and fast fiber type conversions in heavy resistance-trained women / Staron R. S., Malicky E. S., Leonardi M. J. [et al.]. DOIhttps://doi.org/10.1007/bf00572189 // European Journal of Applied Physiology. 1990. Vol. 60, No 1. P. 71–79. EDN: https://elibrary.ru/IOXTHH.
14. Influence of eccentric actions on skeletal muscle adaptations to resistance training / Hather B. M., Tesch P. A., Buchanan P., Dudley G. A. // Acta Physiologica Scandinavica. 1991. Vol. 143. P. 177– 185.
15. Compatibility of high-intensity strength and endurance training on hormonal and skeletal muscle adaptations / Kraemer W. J., Patton J. F., Harman S. E. G. [et al.] // Journal of Applied Physiology. 1995. Vol. 78. P. 976–989.
16. Effect of Hight-Intensity Resistance Training on Untrained Older Men. II. Muscle Fiber Characteristics and Nucleo-cytoplasmic Relationships / Hikkida R. S., Staron R. S., Hagerman F. C. [et al.] // Journal of Gerontology. 2000. Vol. 55, No 7. P. 347–354.
17. Skeletal muscle adaptations during early phase of heavy-resistance training in men and women / Staron R. S., Karapondo D. L., Kramer W. J. [et al.] // Journal of Applied Physiology. 1994. Vol. 76, No 3. P. 1247–1255.
18. Andersen J. L., Klitgaard H., Saltin B. Myosin heavy chain isoforms in single fibres from m. vastus lateralis of sprinters: influence of training // Acta Physiologica Scandinavica. 1994. Vol. 151. P. 135–142.
19. Stretch-shortening cycle exercises: An effective training paradigm to enhance power output of human single muscle fibers / Malisoux L., Francaux M., Nielens H. Theisen D. DOIhttps://doi.org/10.1152/japplphysiol.01027.2005 // Journal of Applied Physiology. 2006. Vol. 100. P. 771–779. EDN: https://elibrary.ru/MEZRRT.
20. Skeletal Muscle Fiber Type and Morphology in a Middle-Aged Elite Male Powerlifter Using Anabolic Steroids / Machek S. B., Lorenz K. A., Kern M. [et al.] // Journal of Science in Sport and Exercise. 2019. Vol. 3. P. 404–411.
21. Extraordinary fast-twitch fiber abundance in elite weightlifters / Serrano N., Colenso-Semple L. M., Lazauskus K. K. [et al.] // PLoS ONE. 2019. Vol. 14. No. 3: e0207975.
22. Язвиков В. В. Петрухин В. Г. Состав мышечных волокон смешанных скелетных мышц как фактор конституции человека // Теория и практика физической культуры. 1991. № 1. С. 38–40.
23. Influences of Endurance Training on the Ultrastructural Composition of the Different Muscle Fiber Types in Humans / Howald H., Hoppeler H., Claassen H. [et al.]. DOIhttps://doi.org/10.1007/bf00589248 // Pflügers Archiv. 1985. Vol. 403. P. 369–376. EDN: https://elibrary.ru/KRJFGG.
24. Cycling exercise-induced myofiber transitions in skeletal muscle depend on basal fiber type distribution / Gehlert S., Weber S., Weidmann B. [et al.]. DOIhttps://doi.org/10.1007/s00421-011-2209-4 // European Journal of Applied Physiology. 2012. Vol. 112. P. 2393–2402. EDN: https://elibrary.ru/DEGIDM.
25. Single Muscle Fiber Adaptations with Marathon Training / Trappe S., Harber M., Creer A. [et al.]. DOIhttps://doi.org/10.1152/japplphysiol.01595.2005 // Journal of Applied Physiology. 2006. Vol. 101. P. 721–727. EDN: https://elibrary.ru/LWUNQR.
26. Skeletal Muscle Plasticity with Marathon Training in Novice Runners / Luden N., Hayes E., Minchev K. [et al.] // Scandinavian Journal of Medicine & Science in Sports. 2012. Vol. 22. P. 662–670.
27. Muscle health and performance in monozygotic twins with 30 years of discordant exercise habits / Bathgate K.E., Bagley J.R., Jo E. [et al.]. DOIhttps://doi.org/10.1007/s00421-018-3943-7 // European Journal of Applied Physiology. 2018. Vol. 118. P. 2097–2110. EDN: https://elibrary.ru/JKIWZT.
